27/11/17

Mejora genética de la vid: avances recientes y experiencias


Resumen del artículo Grapevine breeding: recent progress and experiences (Reinhard Töpfer and Rudolf Eibach, JKI Institute for Grapevine Breeding Geilweilerhof, Siebeldingen, Germany), publicado en ACENOLOGIA 2017, núm.160, julio, dentro del Dossier sobre La diversidad genética de la vid, una herramienta, coordinado por el Prof. José Miguel Martínez Zapater (ICVV).

La mejora genética de variedades de vid no es tarea fácil. Variedades que se pusieron en cultivo en los años noventa del pasado siglo, habían empezado a seleccionarse a partir de cruzamientos  realizados en los años sesenta.  Aparte de la selección para los rasgos de producción y de resistencia requeridos, las variedades que se van a dedicar a la vinificación requieren etapas adicionales de selección en las que es necesario elaborar y analizar los vinos producidos durante varios años y seleccionar las que presentan mayor aptitud enológica. Una vez seleccionada una variedad de calidad, su introducción en el mercado puede ser una dificultad adicional. El proceso se inicia con la inclusión en el registro de variedades pero, en definitiva, la nueva variedad tiene que ganar el interés de productores y consumidores, a menudo acostumbrados a  vinos varietales con fuerte conexión entre la variedad y su vino respectivo.
Reinhard Töpfer y Rudof Eibach del Instituto JKI de Mejora Genética de la Vid de Geilweilerhof en Alemania, opinan que los plazos de tiempo necesarios para la selección de nuevas variedades podrán reducirse hasta diez años conforme se incremente el conocimiento de la genética de la vid. Así, por ejemplo, el avance en la identificación de genes de resistencia a oídio (Erysiphe necator) y  mildiu (Plasmopara vitícola) y a otras enfermedades de la vid ha permitido desarrollar marcadores moleculares que, cuando se utilizan estrategias SAM (selección asistida por marcadores), permiten aceleran la selección en los programas de mejora y confirmar la acumulación de varios genes de resistencia en cada variedad. El uso de marcadores y de “microvides” de generación rápida permite también construir en poco tiempo líneas de mejora portadoras de resistencias poligénicas, con buenas características productivas y libres de aromas desagradables. Líneas de mejora que con más del 97% del genoma de Vitis vinífera servirán para acelerar la mejora de las variedades de élite.
Las primeras variedades alemanas resistentes a oídio y mildiu son portadoras de un gen de resistencia para cada una de estas enfermedades y han servido para demostrar que es posible combinar resistencias a enfermedades y aptitud para la elaboración de vinos de calidad. Muchas de estas variedades no se distinguen de las variedades tradicionales de V. vinifera, ni a nivel taxonómico ni en catas ciegas. La siguiente generación de variedades resistentes podría estar representada por variedades como calardis blanc que se espera llegue al mercado en 2018. Estas variedades serán resistentes a un mayor número de enfermedades de la vid y acumularán varios genes de resistencia  para cada enfermedad, resistencias que seguirán aumentando con cada generación de nuevas variedades mejoradas.

20/11/17

Portaingertos-The history of grape rootstocks and how future needs might be addressed


Walker, M.A.; Riaz, S.; Fort, K.P.; Heinitz, C.C.; Uretsky, J.; Pap, D. Department of Viticulture and Enology, University of California
Davis, CA, USA
Grape phylloxera (Daktulosphaira vitifoliae) were first detected in France in the middle of the 1860s. They were soon noticed across Europe and eventually devastated most of Europe’s vineyards.1 Their rapid dispersal suggests that they were widely spread before being noticed, likely on infested rootings from growers and nurseries, and on contaminated equipment. The phylloxera crisis was preceded by the inadvertent introduction of the grape mildew diseases.  Phylloxera and the mildews are North American in origin and their introduction into Europe was tied to interest in the North American grape species, which were being grown as horticultural curiosities and had attracted attention due to their strong mildew resistance. However, their fruit and wine quality is very different from Vitis vinifera. The mildew diseases were soon controlled with fungicides composed of sulfur and copper. Attempts to control phylloxera first utilized gaseous forms of carbon bisulphide, which ultimately was ineffective. Grape breeders and nurseries then began hybridizing V. vinifera cultivars with wild American Vitis species to create the hybrid direct producers.
The goal of these breeding efforts was to produce a grapevine with high quality fruit and wine, and at the same time a root system with strong resistance to phylloxera feeding. Unfortunately, these efforts yielded cultivars with subpar fruit and wine quality when compared to V. vinifera, and only moderate levels of phylloxera resistance. However, they were often very resistant to powdery and downy mildew, and had relatively strong winter cold tolerance.  They are still grown in some areas with very cold winters, but their wines tend to be very acidic with herbaceous, peppery characters, as well as blue-purple coloration and fox-den aromas.
"The final and successful approach to control phylloxera was the use of resistant rootstocks upon which V. vinifera cultivars could be grafted." 
 
The final and successful approach to control phylloxera was the use of resistant rootstocks upon which V. vinifera cultivars could be grafted. It was reasoned that phylloxera resistance should be present in the North American Vitis species that co-evolved with this aphid-like pest. There are about 30 Vitis species in North America,2 and only two of them root easily from hardwood cuttings, V. riparia and V. rupestris. These two species have strong phylloxera resistance, but differ in a number of characteristics. Vitis riparia grows in most fine-textured, often alluvial soils and has a shallow and primarily fibrous root system. It has the widest distribution of any North American Vitis species and is found from the Rocky Mountains to the Atlantic coast and from Canada to Texas. Forms of this species have excellent winter cold tolerance. It produces a relatively vigorous vine climbing to 15 meters. Vitis rupestris grows in creek beds of coarse gravel caused by periodic and highly erosive flooding. To survive in these creek beds it has deep and relatively thick root system for anchorage. It is a shrubby plant to about 1 m and rarely climbs in trees. It used to be found from Pennsylvania to Texas, but the westward movement of Americans and their cattle in the mid 1800s pushed this species to extinction. It is now only common in southern Missouri, most often in creeks at the base of steep ravines where it is protected from cattle.
These two species were successfully used as rootstocks to replant vineyards that had failed to phylloxera. At first the replanted vineyards grew well, but when vineyards were planted on calcareous soils, these grafted vineyards began to fail to lime-induced chlorosis. French botanists and breeders sought out T.V. Munson, a grape breeder and the US expert on North America Vitis, who suggested the use V. berlandieri from the limestone hills of central Texas (he later received the French Legion of Honor Chevalier du Mérite Agricole for his efforts). This species possess strong lime tolerance and is phylloxera resistant, but it roots poorly from hardwood cuttings. Thus, V. berlandieri was hybridized with the two species that root well: V. riparia to produce rootstocks with lime tolerance, lower vigor and better adaptation to cooler climates; and V. rupestris to produce lime tolerant rootstocks with higher vigor and better adaptation to warmer, drier climates.
"Logic suggests that we should strive for greater genetic diversity to help prevent the selection of more aggressive pests and pathogens.".
 
Hundreds of rootstocks were created by the 1920s and we entered a period of about 70 years where rootstock breeding received relatively scant attention. The traditional rootstocks have been very successful, but there are a number of factors that have prompted renewed interest in rootstock breeding. The first of these is agricultural practice. Throughout most of the World, grape is considered to be a high value crop, and vineyard land devoted to grape is valuable and seldom used for other crops. Yet, one of the most important agricultural principles is the need to rotate crops on a given site to prevent the development and build up of aggressive pathogens and pests. This can be done in vineyards by altering rootstock choices when replanting. However, there are relatively few rootstocks being used, and alternative choices based on soils, wine quality and tradition are limited. There are other factors that also support the need for greater rootstock breeding efforts. First is the relatively narrow genetic base of the rootstocks being using. Recently completed genetic analysis of the world’s most commonly used rootstocks show them to be very closely related and that the same accessions of V. ripariaV. rupestris and V. berlandieri were used in the original hybridization efforts (Riaz, Walker in preparation). Logic suggests that we should strive for greater genetic diversity to help prevent the selection of more aggressive pests and pathogens. Foremost amongst these are phylloxera and nematodes. Moreover, the traditional rootstocks may not possess the characteristics we need to confront climate change as some viticultural regions becoming drier and more saline, and other regions will be in need of rootstocks to hasten or perhaps delay maturity. There are many other past and current rootstock needs that need to be addressed such as resistance to multiple nematode species, better resistance to fanleaf degeneration, tolerance to expression of the red leaf virus diseases, better salinity and drought tolerance.
The rootstock breeding program at the University of California, Davis has been underway since 1989. It follows on the nematode and fanleaf resistance breeding efforts of L.A. Lider, and H.P. Olmo before him.3,4 The program’s breeding objectives are broad and durable nematode resistance, a better understanding of phylloxera resistance, tolerance to fanleaf degeneration and the red leaf virus complex, tolerance to salinity and drought, and combinations of these traits. The first rootstocks to be patented and released from these efforts were GRN-1, GRN-2, GRN-3, GRN-4 and GRN-5 (Grape Rootstocks for Nematodes), and they were released in 2009 and 2010.5 They are resistant to a common strain of root-knot nematode (Meloidogyne incognita) that feeds on V. vinifera and many rootstocks, and two strains that overcome Freedom and Harmony rootstocks (one of which is M. arenaria, HarmA and the other M. incognita, HarmC). They also resist Xiphinema index (the dagger nematode vector of fanleaf degeneration), all of these nematodes in a combined inoculum, and they resist this combined inoculum of nematodes at 30°C soil temperature, at which resistance based on V champinii – Harmony, Freedom, Ramsey and Dog Ridge – breaks down. These soil temperatures are common in the upper soil profile of warm climate vineyards, the same zone that contains the greatest root proliferation and largest populations of soil-borne pests. Thus, these soil temperatures have the potential to encourage the evolution of more aggressive nematode populations. The GRN series rootstocks also resist phylloxera, lesion nematode, four of them resist citrus nematode, and one, GRN-1, resists all these as well as ring nematode (Table 1).5The nematode resistance in GRN-2 through GRN-5 comes from forms of V. champinii V. riparia and V. rufotomentosa. GRN-1’s resistance comes from Muscadinia rotundifolia. To achieve the highest rooting and grafting success with GRN-1 and GRN-5 only well-lignified mature canes should be used.  GRN-1 should also be carefully established in the vineyard. If vines have active growth when late Fall or early Winter freezes occur, they can die back to the trunk.
Table 1. Parentage and nematode resistance of GRN rootstock releases. 1. Root-knot R3 is a standard strain of Meloidogyne incognita that feeds on vinifera and is resisted by Harmony and Freedom, and many other rootstocks. 2. Harm A is a root-knot strain (M. arenaria) that feeds on Harmony and Freedom. 3. HarmC is a root-knot strain (M. incognita) capable of feeding on Harmony and Freedom. 4. Dagger nematode (Xiphinema index). Combined testing used HarmA, HarmC and X. index in a combined inoculation. These plants were also tested at high soil temperatures (30C), which “break” the root-knot nematode resistance in Harmony and Freedom with the combined inoculum (2 through 4). They were then screened for lesion nematode, citrus nematode, ring nematode and phylloxera resistance. R = resistant, S = susceptible, MS = moderately susceptible; MR = moderately resistant [Click here to enlarge on pdf]

The GRN series rootstocks are slowly gaining acceptance. Most are moderately vigorous and are thus far tolerating high and diverse populations of nematodes in vineyards across California. These rootstocks have also been used in crosses to combine broad nematode resistance with salt tolerance. GRN-1 has not been used as a parent because it is sterile with 39 chromosomes, as in the case of almost all Vitis x Muscadinia hybrids. The grape breeding program is using several rare fertile V. vinifera x M. rotundifolia hybrids produced by H.P. Olmo, but their phylloxera resistance is being carefully evaluated prior to use as parents. Muscadinia rotundifolia has exceptional resistance to soil-borne pests and is the source of fanleaf degeneration resistance in UC Davis’ O39-16.3 This V. vinifera x M. rotundifolia (VR) hybrid is now off patent restrictions, but is sterile. There were concerns about O39-16’s ability to resist phylloxera given its 50% V. vinifera parentage, but it has proven to be phylloxera resistant for over 30 years of vineyard use. O39-16 is also one of our best sources of ring nematode resistance. However, it is susceptible to root-knot nematodes and is not well adapted to calcareous soils.
Grapevines are sensitive to salty water and soils. The damage is not from high levels of sodium, to which they are relatively tolerant, but from chloride. The Walker lab has worked to develop better methods to screen for chloride tolerance in grape and to better understand the genetics of salt tolerance. Although the rootstocks Ramsey and 140Ru have been used successfully in saline soils, as climates get drier better forms of chloride tolerance or exclusion will be needed. We have amassed an extensive collection of southwestern Vitis species over the last 25 years. These collection efforts were stimulated by the discovery that forms of V. arizonica from northern Mexico were the inadvertent parents in a number of crosses made by H.P Olmo.6 These crosses were intended to be V. rupestris x M. rotundifolia but many forms of V. arizonica contaminated the crosses. This was fortuitous as within the mixed crosses we found resistance to Xiphinema index, root-knot nematode, phylloxera and Pierce’s disease (PD). Individuals from these populations have been used as parents in our PD resistant winegrape breeding and in our rootstock breeding.
Over 700 accessions of southwestern Vitis have been collected from trips throughout California, Nevada, Arizona, Utah, Colorado, Texas, and Oklahoma. We have found exceptional forms of chloride tolerance in V. acerifolia and V. doaniana from saline banks of the Red River between Oklahoma and Texas, and in V. girdiana from desert springs in Nevada and Arizona. We have crossed the salt resistant accessions with the GRN series and other rootstocks to combine nematode resistance and chloride tolerance and are currently selecting for the combination of these traits as well as different levels of vigor and root architecture. One of the more interesting traits available in this germplasm is strong resistance to Xiphinema index, given that this nematode is considered to be from Central Asia and North American Vitis spp. would not be expected to resist it. We have genetically and physically mapped this resistance and named the resistance locus XiR1.7,8This locus was found in a form of V. arizonica from Loreto, Mexico, and has since been found in other forms of V. arizonica. We have transformed XiR1 into Rupestris St. George to prove its function and are using tightly linked genetic markers to combine X. indexresistance with other traits through marker-assisted selection.
Strong sources of boron tolerance were also found in the southwestern Vitis germplasm: in V. girdiana from near boron deposits in southeastern California; V. arizonica from alkali flats in southern Arizona; and V. acerifolia from northern Texas. We are incorporating this resistance into our salt and nematode resistant rootstocks and have developed mapping populations to further characterize this trait.
Finally, resistance to Xylella fastidiosa, the causal agent of Pierce’s disease, is also common in the southwestern Vitis species.9,10 We have genetically and physically mapped resistance from a form of V. arizonica from Monterrey (Mexico) and continue to evaluate and genetically map PD resistance from various forms of V. arizonica collected from Arizona, New Mexico and Texas.
One of the most interesting aspects regarding the southwestern US Vitis is why they have not been used in rootstock breeding. In fact, until recently there was only one accession of V. arizonica in the United States Department of Agriculture’s National Germplasm Repository for Grape, and very poor characterization of the Vitis species from west of Texas.  These species root relatively poorly from hardwood cuttings, and some tend to be relatively brushy in growth habit leading to limited yields of cuttings. Additionally, there were concerns that their phylloxera resistance was insufficient given that the root-feeding forms of phylloxera are not common across the southwestern US. Although, foliar feeding forms are common when Vitis spp. are found near streams and creek beds that are protected by tree canopies. Finally, the Vitis species in the dry areas of the southwestern US have very patchy distributions, and far more effort is required to observe and collect them than for Vitis species in the wetter eastern US. The southwestern Vitis spp. are poorly documented and are in fact complexes and intergrading hybrids among V. arizonicaV. girdianaV. acerifoliaV. riparia, and perhaps V. monticolaV. berlandieriV. candicans, and V. rupestris. Fortunately, this germplasm exists and as it is better understood and characterized it will play a large role in the breeding of rootstocks capable of addressing climate change and evolving soil-borne pests.

References
1. Granett, J.; Walker, M.A; Kocsis, L; Omer, A.D: Biology and management of grape phylloxera. Annual Review of Entomology 2001; 46: 387-412.
2. Walker, M.A.: The Genus Vitis, Its Species and Its Rootstocks. IN: Compendium of Grape Diseases, Disorders, and Pests, 2nd Edition, Ed. W.F. Wilcox, W.D Gubler and J.K. Uyemoto et al. American Phytopathology Press, 2015.
3. Walker, M.A.; Lider, L.A.; Goheen, A.C.; Olmo, H.P.: VR O39-16. HortScience 1991; 26: 1224-5.
4. Walker, M.A.; Wolpert, J.A.; Weber, E.: Field screening of grape rootstock selections for resistance to fanleaf degeneration. Plant Disease 1994; 78: 134-6.
5. Ferris, H.; Zheng, L.; Walker, M.A.: Resistance of grape rootstocks to plant-parasitic nematodes. Journal of Nematology 2012; 44:377-86.
6. Riaz, S.; Vezzulli, S.; Harbertson, E.S.; Walker, M.: Use of molecular markers to correct grape breeding errors and determine the identity of novel sources of resistance to Xiphinema index and Pierce’s disease. American Journal of Enology and Viticulture 2007; 58: 494-8.
7. Xu, K., Riaz, S.; Roncoroni, N.C.; Jin, Y,; Hu, R.; Zhou, R.; Walker, M.A.: Genetic and QTL analysis of resistance to Xiphinema index in a grapevine cross.  Theoretical and Applied Genetics 2008; 116: 305-11.
8. Hwang, C-F., K. Xu, R. Hu, R. Zhou, S. Riaz and M.A. Walker. Cloning and characterization of XiR1, a locus responsible for dagger nematode resistance in grape. Theoretical and Applied Genetics (2010) 121: 789-99.
9. Krivanek, A.F., Riaz, Walker, M.A.: 2006. The identification of PdR1, a primary resistance gene to Pierce’s disease in VitisTheoretical and Applied Genetics 2008; 112: 1125-31.
10. Riaz, S., Tenscher, A.C.; Rubin, J.; Graziani, R.; Pao, S.S.; Walker, M.A.: Fine-scale genetic mapping of two Pierce’s disease resistance loci and a major segregation distortion region on chromosome 14 of grape. Theoretical and Applied Genetics 2008; 117: 671-81.

13/11/17

Portainjertos: cómo dar respuesta a las necesidades futuras


Resumen del artículo The history of grape rootstocks and how future needs might be addressed (Walker, M.A.; Riaz, S.; Fort, K.P.; Heinitz, C.C.; Uretsky, J.; Pap, D. Department of Viticulture and Enology, University of California
Davis, CA, USA)
, publicado en ACENOLOGIA 2017, núm.160, julio, dentro del Dossier sobre La diversidad genética de la vid, una herramienta
para afrontar los retos del cambio global La diversidad genética de la vid, una herramienta , coordinado por el Prof. José Miguel Martínez Zapater (ICVV).

El uso de portainjertos en la vid surgió como estrategia para generar resistencia a la plaga de la filoxera (Daktulosphaira vitifoliae) manteniendo la calidad de la uva y la aptitud enológica de las variedades. La resistencia a esta plaga está muy extendida en las especies del género Vitis de Norteamérica, aunque solo tres de ellas tuvieron un papel relevante en el desarrollo de portainjertos: V. riparia y V. rupestris por su capacidad de enraizamiento y V. berlandieri por su tolerancia a suelos calcáreos. Si bien en los años veinte se seleccionaron cientos de portainjertos a partir de cruzamientos entre estas especies, esta actividad quedó prácticamente abandonada hasta los años noventa. Solo recientemente se ha suscitado un renovado interés por la mejora genética de portainjertos, motivada por las necesidades de replantar en los propios viñedos evitando las rotaciones de cultivo, hacer frente al cambio climático aumentando la tolerancia a la salinidad y a la sequía e introducir nuevas resistencias a distintas especies de nematodos o a enfermedades virales. En última instancia, se ha vislumbrado la importancia de aumentar la diversidad genética de los portainjertos para prevenir así la selección de plagas y patógenos más agresivos.
Desde 1989, la Universidad de California en Davis inició un programa de mejora de portainjertos que tenía como objetivo principal la selección de plantas con una resistencia amplia y duradera a nematodos incluyendo tolerancia a enfermedades virales a salinidad y sequía. Fruto de este programa se generaron a partir de 2009 portainjertos de la familia denominada GRN (por Grape Rootstocks for Nematodes) resistentes a nematodos como Meloidogyne incognitaM. arenaria, y Xiphinema index entre otras características. Estas resistencias proceden de especies como Muscadinia rotundifoliaVitis champinii, V. riparia y V. rufotomentosa. Los portainjertos de la serie GRN también se han utilizado como progenitores para combinar su amplia resistencia a nematodos con tolerancia a la salinidad.
La búsqueda de variación genética para la tolerancia a la salinidad de los portainjertos ha llevado al laboratorio de A. Walker a explorar las capacidades de otras especies del género Vitis nativas del sudoeste de Estados Unidos y del norte de México. Entre ellas, resultan particularmente interesantes las características encontradas en especies como V. arizonica, V. acerifolia, V. doaniana o V. girdiana. Además de la tolerancia a la salinidad algunas de las accesiones recolectadas en poblaciones naturales representan nuevas fuentes de tolerancia al boro o contienen nuevas resistencias a nematodos o a Xylella fastidiosa. La diversidad genética de estas especies, que no habían sido consideradas previamente, puede desempeñar un papel muy importante en la mejora de nuevos portainjertos capaces de afrontar el cambio climático y contrarrestar la evolución de las plagas del suelo.

6/11/17

Tempranillo blanco: una variedad fruto de la variación genética de la vid (Vitis vinífera L)


Juana Martínez y Enrique García-Escudero Instituto de Ciencias de la Vid y del Vino (ICVV)
(CSIC, Universidad de La Rioja, Gobierno de La Rioja)
Logroño 
El concepto de calidad, que resulta muy dinámico y subjetivo, ha experimentado cambios en los últimos años. De la idea tradicional de que la uva de calidad es aquella que presenta un nivel de maduración y de sanidad adecuados, se ha pasado a considerar otros atributos, entre los que destaca la calidad basada en la tipicidad y singularidad de la uva, cuestión muy valorada por un amplio segmento del mercado, que huye de la estandarización asociada a viñedos productivos, al uso de un número reducido de variedades y a la utilización mayoritaria de determinados métodos de elaboración y conservación de los vinos. En definitiva, un consumidor que no gusta de la homogeneización de la oferta de vinos que encuentra en el mercado.
Cepa original (mutación)
En este contexto, se sitúa la variedad tempranillo blanco que surge por mutación natural de una cepa de tempranillo, detectada en 1988 por el Servicio de Investigación Vitivinícola de La Rioja (anteriormente Centro de Investigación y Desarrollo Agrario) en un viñedo de la localidad riojana de Murillo de Río Leza, a punto de ser arrancado. No se trata en este momento de explicar las razones genéticas que encierra la mutación aludida, de lo que pueden dar buena cuenta el equipo Vitigen del Instituto de Ciencias de la Vid y del Vino (ICVV), sino más bien de hablar de la evolución y características de esta singular variedad, así como de su potencial cualitativo.

Antecedentes
Tras el hallazgo de la mutación, las primeras actuaciones se centraron en la multiplicación de material vegetal y en la observación de la estabilidad de sus caracteres. Posteriormente, se procedió a establecer la primera plantación de tempranillo blanco, con apenas cien cepas, en la finca Valdegón (Agoncillo; La Rioja), propiedad de la Comunidad Autónoma de La Rioja, que permitió a partir de 1995 las primeras evaluaciones agronómicas y enológicas de la que sería más tarde variedad autorizada en la DOCa Rioja.
En la campaña 2000-2001, se produce un avance sustancial en el estudio de la variedad gracias a la plantación de 1 ha en la finca institucional de La Grajera (Logroño), y a la presencia de tempranillo blanco en otra parcela experimental de la finca que permitió establecer la comparación con otras variedades blancas, en las mismas condiciones de cultivo. La campaña 2005 marcó el inicio de un período de profundización en el conocimiento de la variedad como tal, y su posición respecto a otras variedades.
En gran medida, estos estudios fueron esenciales para justificar y apoyar la decisión de incluir a tempranillo blanco en la lista de variedades comerciales (Orden APA/4401/2004 publicada en el BOE nº6, de 7 de enero de 2005), y su posterior autorización en el ámbito de la DOCa Rioja (Orden APA/689/2008 de 8 de marzo y Orden ARM/1372/2009 de 27 de mayo).
«Hoy día, tempranillo blanco es la segunda variedad blanca de la DOCa Rioja en lo que a superficie de cultivo se refiere.».
En la actualidad, los estudios en torno a tempranillo blanco se han visto ampliados a través de la creación de una red de ocho parcelas de ensayo en toda la geografía riojana, con la finalidad de valorar la adaptación a diferentes entornos vitícolas y la potencial vocación de la variedad. Se trata de un cultivar polivalente, habiendo dado buenos resultados para la elaboración de vinos tranquilos, tanto jóvenes como envejecidos en barrica, y de espumosos naturales,1 así como destilados muy interesantes.
La autorización de tempranillo blanco y su buena respuesta ha contribuido decisivamente a la intención de la DOCa Rioja por ampliar la oferta de vinos blancos de calidad, cuestión que se consideró prioritaria en el Plan Estratégico para la DOCa Rioja 2005-2020, que encargó en su momento el Consejo Regulador. La intención de esta institución del vino pasaba por equilibrar el monocultivo de la variedad viura, que representa más del 70% de la totalidad del viñedo de variedades blancas (4210 ha, en 2017). Así las cosas, se abrieron tres líneas básicas de actuación:
  1. El reconocimiento del potencial cualitativo de las variedades blancas tradicionalmente cultivadas en la DOCa Rioja: garnacha blanca, malvasía riojana y viura.

  2. La introducción de variedades foráneas de reconocido prestigio: chardonnay, sauvignon blanc y verdejo.

  3. La consideración de dos variedades minoritarias incluidas en proyectos de investigación desarrollados por el Servicio de Investigación Vitivinícola y la Universidad de La Rioja: tempranillo blanco y maturana blanca. En 2009, en este apartado se autorizó también la variedad turruntés (albillo mayor).
  4. En la actualidad, tempranillo blanco es la segunda variedad blanca de la DOCa Rioja en lo que a superficie de cultivo se refiere, con 607 ha (11%), que da muestra de la gran aceptación que ha tenido la variedad entre viticultores y bodegas de Rioja desde sus autorización en 2008, siendo esta región vitícola la única en la que está autorizada dicha variedad, por lo que a fecha de hoy asume el atributo de singular y además ostenta un nombre insigne con referencias que se asocian a calidad: tempranillo.

    Características morfológicas y agronómicas
    Desde un punto de vista morfológico, tempranillo blanco presenta hojas adultas de talla media, con cinco a siete lóbulos superpuestos. Posee un seno peciolar poco abierto, en forma de U. El pecíolo de la hoja es relativamente corto. Se observa cierta pilosidad de densidad media en el envés, que se hace más elevada en los nervios. En su borde, el limbo dispone dientes con ambos lados convexos, largos y con una relación longitud/anchura elevada. Los racimos son de tamaño medio, más bien sueltos y de pedúnculo corto. Por su parte, las bayas son más bien de pequeñas a medias. El porte de la cepa es semierguido.

    Racimo de tempranillo blanco

    A pesar de la similitud con tempranillo tinto, tempranillo blanco tiene algunas diferencias morfológicas respecto al cultivar tinto dignas de reseñar, además del color de la baya.2 Las hojas son de menor tamaño, de color más abierto, con menor consistencia y con vellosidad más débil. Por su parte, los racimos son más pequeños, sueltos y menos alargados que en tempranillo, y con menor presencia de hombros. La baya también es más pequeña y ligeramente aplastada. El número de pepitas por baya es menor en tempranillo blanco, pero de mayor tamaño.
    A través del seguimiento de su fenología, se aprecia cómo la brotación de la variedad es tardía, con una fecha de floración considerada media para la zona, un envero precoz y una fecha de vendimia muy precoz, pudiéndose considerar a tempranillo blanco como una variedad de ciclo corto.3 En condiciones medias de Rioja, puede llevarse un adelanto de tres semanas para la recolección respecto a la variedad blanca mayoritaria, la viura. Desde este punto de vista, presenta aptitudes para el cultivo en entornos diversos, completando adecuadamente el ciclo de maduración en zonas tardías. Ahora bien, con un período de maduración rápido nos obliga a vigilar con esmero este proceso, para así elegir adecuadamente la fecha de vendimia, y evitar una elevada concentración de azúcares, si bien el grado se equilibra con su buena acidez.

    Cepa de tempranillo blanco con deshojado

    De vigor medio-alto (0,6 kg por cepa de madera de poda), expresa una fertilidad elevada, con valores del peso de racimo y de la baya relativamente bajos de 180 g y 1,7 g respectivamente, alcanzando niveles de rendimiento medio en torno a los 3,3 kg/planta. Los valores se han obtenido para un período de más de diez años en la finca La Grajera. La producción media, en los últimos cinco años, en las parcelas experimentales ubicadas en diferentes zonas de la DOCa Rioja, se ha situado entre los 2,5 y los 4,2 kg/cepa, valores que confirman los resultados expresados anteriormente. En la última campaña (2016), los rendimientos alcanzados han sido en general de los más elevados que se han registrado hasta la fecha, coincidiendo con lo observado por lo general para la zona en la mayor parte de variedades.
    Tempranillo blanco se adapta bien tanto a sistemas de poda corta, como larga o mixta. Su porte semierguido y su sensibilidad a daños mecánicos por acción del viento hacen aconsejable su conducción en espaldera. Aunque con mayor tolerancia que tempranillo, se muestra sensible a situaciones favorables a estrés hídrico, por lo que responde bien a estrategias moderadas de riego. En experiencias llevadas a cabo en Rioja, desde 2010 y hasta la fecha, se ha comprobado cómo el riego no ha supuesto un incremento elevado del rendimiento en esta variedad, salvo en casos muy extremos, modificando favorablemente componentes de la calidad. Los resultados de estos estudios apuntan en la misma línea que los ya realizados en tempranillo, pero con menor intensidad de expresión.
    En lo que a mayor o menor sensibilidad a plagas y enfermedades se refiere, esta variedad guarda paralelismo con tempranillo: sensible a acariosis y polilla del racimo, y medianamente sensible a mildiu y oídio. Su menor compacidad de racimo le sitúa en una mejor posición frente a botritis, sobre todo si la comparamos con viura o tempranillo. En determinadas campañas, se ha observado presencia de millerandage en racimo, en parte asociado a su baja fertilidad de polen, y sobre todo a su interacción con condiciones climáticas desfavorables en el período de floración (precipitaciones, humedad ambiental y temperaturas bajas).

    Viñedo de tempranillo blanco con cubierta vegetal en otoño

    Características de la uva y del vino
    La variedad tempranillo blanco, tal como se ha indicado, es de maduración temprana, por lo que puede alcanzar fácilmente una graduación alcohólica elevada y por ello, es preciso realizar un seguimiento muy exhaustivo del proceso de maduración. Por otra parte, esta característica supone una ventaja en las zonas más tardías, ya que completa correctamente el período de maduración. El grado alcohólico medio de los vinos elaborados con uva procedente de la Finca La Grajera ha sido de 13,3%vol.
    El contenido de acidez total, tanto en uva como en vino, también presenta valores elevados. En el momento de vendimia, los mostos alcanzan una acidez total variable entre 7,5 y 9,0 g/l, dependiendo de las condiciones climatológicas de la campaña y de la ubicación del viñedo. En los vinos, los valores medios de acidez se sitúan en el rango de 7,0-8,5, siendo los pH de 3,0-3,3. Se trata, por tanto, de una variedad con muy buenos niveles de acidez, que permiten equilibrar en su caso el contenido alcohólico elevado de sus vinos.
    En cuanto a la concentración de ácidos, el ácido tartárico presenta valores medio-altos, entre 7,0-8,0 g/l en los mostos, y entre los 2,0 y los 3,4 g/l en los vinos de esta variedad. Ahora bien, su contribución a la acidez de los vinos está limitada por los niveles de potasio presentes, que suelen ser altos. En los mostos, este catión puede encontrarse en un rango variable de 1200 a 1900 mg/l, y en los vinos varía entre 500 y 1000 mg/l.
    Por su parte, el ácido málico se presenta con un contenido bastante elevado en tempranillo blanco. Su concentración media en los mostos puede alcanzar valores en el rango de 2,0 a 5,2 g/l, mientras que en los vinos suele estar entre 2,0 y 3,0 g/l. Este compuesto, en valores moderados, refuerza el frescor de los vinos, por lo que puede considerarse positivo a nivel sensorial.
    Esta variedad muestra un contenido alto de polifenoles totales si se compara con otras variedades blancas, con valores de IPT (280 nm) en sus vinos entre 6,2 y 9,0.
    Estos resultados, en cuanto a composición química, indican que se trata de una variedad equilibrada en grado, acidez y contenido polifenólico, que puede ser adecuada tanto para la elaboración de vinos jóvenes, como para otro tipo de vinos destinados a un procreso de crianza en barrica.3
    En los vinos de tempranillo blanco, la concentración de aromas afrutados de carácter fermentativo es elevada,4 destacando algunos acetatos de alcoholes superiores, como el acetato de isoamilo (aroma a plátano), con gran incidencia en el aroma, y el acetato de hexilo (aroma a pera). Asimismo, los ésteres etílicos de ácidos grasos también son abundantes en los vinos, principalmente etil-3-hidroxibutirato y butirato de etilo (aromas a piña, kiwi, fresa…).
    .«Su color es amarillo pajizo-verdoso de intensidad media, el potencial aromático alto, con notas aromáticas afrutadas a manzana, pera, plátano, piña y cítricos.»
    «
    El análisis sensorial de los vinos de tempranillo blanco manifiesta características organolépticas de alta calidad. Su color es amarillo pajizo-verdoso de intensidad media, el potencial aromático alto, con notas aromáticas afrutadas a manzana, pera, plátano, piña y cítricos. Asimismo presenta aromas florales intensos y característicos. Su paladar es equilibrado, estructurado y persistente.
    Tempranillo blanco es una variedad que presenta buena y amplia aptitud, por lo que ofrece posibilidades en lo que a la diversificación de los vinos se refiere: vinos varietales, mezclas con otras variedades, vinos jóvenes, vinos fermentados y/o envejecidos en barrica. Asimismo, las experiencias realizadas en la elaboración de vinos espumosos naturales y en destilados, han conducido a resultados muy interesantes a nivel cualitativo, lo que viene a confirmar el enorme abanico de posibilidades que puede ofrecer esta variedad.
    A modo de consideración final, podemos decir que tempranillo blanco representa una clara y decidida alternativa para la diferenciación de los vinos blancos en la DOCa Rioja, ya que su cultivo actualmente está limitado a esta zona, y además se trata de un cultivar que aporta características singulares de alta calidad a los vinos, con posibilidades enológicas muy amplias y diversas.

    Bibliografía
    1. Martínez J, Suberbiola J, López E, Gonzalo A, Baroja E, García-Escudero E: Vinos espumosos de Tempranillo blanco. Cuaderno de Campo 2015, 59: 36-9.
    2. Martínez J, Vicente T, Martínez T, Chavarri JB, García-Escudero E: Una nueva variedad blanca para la DOCa. Rioja: el Tempranillo Blanco. XXIX Congreso Mundial de la Viña y el Vino (OIV). Logroño, junio 2006. Vol 1, Viticultura, Subsección 1.1, pp. 41-3.
    3. Martínez J, López E, Baroja E, Pérez D, Chavarri JB, García-Escudero E: Evaluación agronómica y enológica de la variedad Tempranillo blanco (Vitis vinifera L.) y de otras variedades minoritarias blancas de la DOCa Rioja. I Jornadas del Grupo de Viticultura y Enología de la SECH. Retos actuales de la I+D en Vitivinicultura. Logroño, junio 2014. Actas de Horticultura/70. I Jornada del Grupo de Viticultura y Enología. Eds. Enrique García-Escudero e Ignacio Martín, pp 27-33.
    4. Martínez J, Gonzalo A, López E, Rubio P, Baroja E, García-Escudero E: Perfil aromático de vinos blancos elaborados con variedades minoritarias de la DOCa Rioja. XIII Congreso Nacional de Investigación Enológica (GIENOL). Tarragona, junio 2015. Enologia2015. Innovación vitivinícola. Servei de Publicacions de la URV. Editores Joseph Guasch i Torres, Olga Busto Busto, Monserrat Mestres i Solé, Laura Aceña Muñoz y Jaume Capdevila i Aranda, 2015, pp. 371-6.

1/11/17

Bruñal: recuperación, registro y selección clonal de una variedad tinta minoritaria emergente


Jesús Yuste Instituto Tecnológico Agrario de Castilla y León (ITACyL)
Valladolid 
.
«
Racimo de variedad bruñal
Origen de la variedad
El origen de la variedad bruñal hay que situarlo probablemente en el noroeste de la península Ibérica, aunque no está claro en qué zona concreta, pues aunque García de los Salmones1 en 1914 citó su presencia en la provincia de Salamanca, la primera mención de esta variedad (en 1879) pudo ser hecha con la denominación albarín negro por Suárez-Cantón,2 que la describió como “variedad tinta de racimo pequeño y flojo; uva redonda, pequeña, negra y de hollejo fino”. García de los Salmones también citó su presencia,1 como uva negra, en la provincia de Asturias con el nombre de albarín, pero también con la denominación de albarín negro. Pacottet3 citó en 1928 el cultivo de la variedad bruñal tinto en la provincia de Zamora, y Comenge4 describió ya en los años cuarenta el albarín negro como variedad cultivada en Cangas de Narcea (Asturias). Por otro lado, Zerolo et al.5 describen probablemente esta variedad con el nombre de baboso negro en la isla de El Hierro (Canarias).
Etimológicamente la palabra bruñal puede tener su origen en la palabra bruna o bruno, que según el diccionario de la Real Academia Española significa “de color negro u oscuro”. No hay que confundir bruñal (Vitis vinifera L.) con bruñal silvestre (Prunus spinosa), cuyos frutos son los bruños o endrinas.
Las sinonimias encontradas de manera recurrente de la variedad bruñal5-8 son: albarín negro, baboso negro y alfrocheiro preto. No obstante, bruñal también es conocida en algunas zonas de Arribes como uva negra o touriga negra.8 Alfrocheiro preto está extendida en la región portuguesa de vinho de qualidade DOC “Dao”9 y es conocida también en esa zona como pé de rato, “pie de rata”, según Gallego et al.10 Albarín negro está admitida para cultivo en la zona de Vino de la Tierra de Cangas, en Asturias.11
Baboso negro está recogida en el Registro de Variedades Comerciales12 como sinonimia de bastardo negro (con inscripción provisional) pero no por Zerolo et al.,5 que indican que baboso negro y bastardo negro son variedades diferentes, lo que implicaría la existencia de una homonimia. Además, existe bastardo tinto en Portugal con una extensión de 215 ha,9que podría ser una sinonimia de bastardo negro. La variedad bastardo, cultivada en Portugal (1100 ha), es conocida también como abrunhal en la zona portuguesa de Beira Alta9 y como merenzao en España,7 a pesar de que Pereira et al.12  la citan como sinonimia de bruñal y tinta pinheira.

Localización e identificación
La variedad bruñal ha sido localizada principalmente en la zona de Arribes del Duero, mayoritariamente en los términos municipales de Corporario10 y Villarino de los Aires.7 Dicha zona geográfica conocida como Arribes del Duero, situada en el oeste de las provincias de Salamanca y Zamora, en Castilla y León (fig. 1), presenta una orografía accidentada, con frecuentes laderas y profundos valles donde se cultiva con dificultad el viñedo y donde ha perdurado hasta la actualidad, asentándose mayoritariamente sobre bancales. La situación geográfica de esta comarca, junto a su carácter orográficamente accidentado y de cultivo costoso, ha provocado que algunos viñedos hayan permanecido relativamente aislados, por lo que se han conservado poblaciones de cepas que constituyen un material vegetal que puede ser de gran interés genético.
Figura 1. Mapa de Castilla y León con las diferentes denominaciones de origen, incluida la DO Arribes.

El proceso de localización de la variedad bruñal en la zona de Arribes del Duero comenzó en el año 2002 con una amplia prospección en campo, tras la cual se marcaron 34 cepas de dicha variedad, repartidas en 16 parcelas de los distintos municipios de dicha comarca, buscando la máxima dispersión geográfica.8 Una vez etiquetadas dichas cepas en el campo se procedió a su descripción ampelográfica y agronómica, así como a su análisis genético mediante la utilización de marcadores moleculares (microsatélites, STMS).
La descripción ampelográfica se llevó a cabo durante el período 2003-2005, utilizando 66 caracteres ampelográficos descritos en los Códigos de Caracteres de las variedades y especies del género Vitis, establecidos por la OIV en 1984,13 además de tres caracteres tomados según las indicaciones del proyecto GENRES.14 La toma de datos fue realizada por tres ampelógrafos, con los que se tomaron muestras de 10 pámpanos distintos de cinco cepas de cada variedad, estando siempre las plantas en parcelas distintas, con el fin de absorber las posibles diferencias entre plantas cultivadas en distintas parcelas. Se obtuvieron 10 datos de cada descriptor, eligiéndose la moda de los mismos para obtener el dato final. Las observaciones se tomaron según las especificaciones que indica la OIV para cada órgano en la época correspondiente.13
El análisis genético se realizó sobre una cepa de cada variedad en cada parcela, con un grupo de microsatélites que integran varios loci y que son los siguientes: VVS2, caracterizado por Thomas y Scott,15 VVMD5 y VVMD7, caracterizados por Bowers et al.,16VrZAG47, ssrVrZAG62 y ssrVrZAG79, caracterizados por Sefc et al.17 Se analizaron dos extractos de DNA de cada individuo muestreado. La combinación de las técnicas moleculares y la descripción ampelográfica permitió identificar y diferenciar de manera precisa la variedad bruñal, lo que posteriormente ha permitido también la identificación de sinonimias de la variedad bruñal.8
El resultado del análisis genético de bruñal realizado con marcadores microsatélites es el expresado en la tabla 1:8
Tabla 1. Tamaño de alelos de la variedad bruñal obtenido mediante microsatélites 

La identificación ampelográfica y molecular de la variedad bruñal ha permitido saber que algunas cepas localizadas en otras prospecciones con nombres diferentes en la DO Bierzo (León) y en la comarca de la Sierra de Francia (Salamanca), correspondían en realidad a dicha variedad. Asimismo, dicha identificación ha permitido saber que bruñal y tinta pinheira son variedades diferentes, resultando ser esta última una sinonimia de rufete.

Caracterización y registro
La caracterización ampelográfica de bruñal ha mostrado algunos rasgos sobresalientes, de entre los que se pueden destacar los siguientes. Los caracteres de pámpano y hoja más reseñables son, por un lado, el porte semierguido del pámpano, y por otro, la forma pentagonal de la hoja, que presenta tres lóbulos y cuyo tamaño es pequeño, presentando vellosidad tumbada en su haz así como una longitud de peciolo corta (fig. 2).
Figura 2. Envés de hoja adulta (izqda.) y haz de hoja adulta (dcha.).

Tanto el tamaño de racimo como el de baya son pequeños, siendo los racimos normalmente compactos y de forma cilíndrica (fig. 3).
Figura 3. Bayas (izqda.) y racimo (dcha.).

La caracterización agronómica y enológica de bruñal ha mostrado un comportamiento en el que se pueden destacar los siguientes aspectos. La brotación es de época media-temprana y la maduración de época más bien temprana.18 El nivel productivo y el desarrollo vegetativo se sitúan en rangos moderados, aunque muy dependientes de las condiciones de cultivo. En cuanto a las aptitudes enológicas, la variedad bruñal muestra un alto potencial de maduración tecnológica, con elevado nivel tanto de azúcares como de acidez. Presenta aromas y sabores a frutas de bosque y, destacadamente, un alto contenido en polifenoles con respecto a otras variedades presentes en la zona, lo que permite vislumbrar que con adecuada maceración y apropiada crianza puede dar lugar a vinos tintos de alta calidad.
El análisis organoléptico del vino tinto elaborado con la variedad bruñal en varias campañas ha respondido en general a los siguientes rasgos:8 color de tono rojo-guinda, con cobertura media, y algún recuerdo de tonos azul-violáceos; intensidad aromática media-alta, con notoriedad de aromas primarios; gusto equilibrado, bien estructurado, con acidez bien ensamblada y tonos de fruta madura en fase retronasal.
«Como sinonimias oficiales de bruñal están reconocidas las denominaciones de albarín tinto y baboso tinto.».
Tras la descripción y la caracterización de la variedad, se procedió a la tramitación oficial para su inscripción en el Registro de Variedades Comerciales, regulado por la Oficina Española de Variedades Vegetales (OEVV), del Ministerio de Agricultura. Este procedimiento exige la aportación de una amplia documentación descriptiva y de material vegetal requerido para su análisis y evaluación, por parte de la OEVV. El Departamento de Viticultura del ITACyL realizó la aportación de dichos requisitos en el año 2006 (Yuste et al. 2010).8 Tras varios años de análisis la variedad bruñal ha sido reconocida oficialmente en la lista oficial del Registro de Variedades Comerciales de Vid, según Orden ARM/624/2011, de 18 de marzo, publicada en el BOE n.º 71, de 24 de marzo de 2011. Dicha Orden reconoce como sinonimias oficiales de bruñal las denominaciones de albarín tinto y baboso tinto.

Estado sanitario y recopilación de material
El objetivo final del trabajo, tras la localización, la identificación, la descripción y la inscripción de la variedad bruñal en el Registro Comercial de Variedades de Vid, abarcaba fundamentalmente la recopilación de material sano que fuera la base de partida de una posible selección clonal y el propio desarrollo de un proceso de selección clonal para su oferta al sector vitícola.19
Se llevó a cabo un análisis serológico concerniente a la presencia de virus en las cepas marcadas, para evaluar el estado sanitario de las mismas, a través del test ELISA mediante el método DAS directo con anticuerpos de la marca Bioreba. Los virus examinados fueron: entrenudo corto infeccioso (GFLV), enrollado (serotipos GLRaV 1, 3 y 6) y jaspeado (GFkV). El análisis se realizó sobre madera obtenida en la poda en seco en las épocas intermedias de reposo vegetativo entre 2003 y 2005.8
En el año 2005 se procedió a una preselección de cepas originales, a la recogida de material individualizado de cada una de ellas y a la implantación de las mismas, junto a un conjunto de otras variedades minoritarias, en una parcela de comparación en la DO Arribes. En dicha parcela se dispone de nueve posibles clones diferentes de bruñal sobre dos portainjertos distintos (110R y 3309C), que han venido siendo estudiados en los últimos años.
Paralelamente, en 2006 se llevó a cabo la implantación de tres clones en la finca experimental de Zamadueñas (Valladolid), con el objetivo de afrontar un procedimiento de selección más intenso y rápido, que pudiera ser ofrecido pronto al sector, dado el creciente interés suscitado en el sector vitivinícola derivado de las características agronómicas y enológicas de la variedad.

Selección clonal
Tras la primera preselección clonal, se llevó a cabo la plantación de 10 cepas de cada uno de los tres clones de Bruñal previamente elegidos en viñedos originales, en una colección experimental del ITACyL ubicada en la finca Zamadueñas, en Valladolid, que incluye clones preseleccionados de otras cinco variedades minoritarias tradicionales.19 Este planteamiento se basa en la consideración de que cualquier programa de selección clonal debe evaluar el comportamiento de los posibles clones en un mismo ámbito geográfico y edafoclimático, para que las posibilidades de comparación entre clones sean objetivas.20


Cómo clonar
Clones seleccionados: El material vegetal de los clones preseleccionados (Vitis vinifera L. cv. Bruñal) fue injertado mediante púas sobre patrón 110 Richter en la primavera de 2006, pues las plantas de portainjerto habían sido colocadas en el terreno en 2005. Los clones preseleccionados de bruñal son: CL-96, CL-128, CL-89.
Disposición: Las cepas están dispuestas con un marco de plantación de 2,7 m x 1,4 m (2645 cepas/ha). Están conducidas en espaldera, con un sistema de poda en cordón Royat bilateral, en el que se ha dejado una carga de 16 yemas, distribuidas en 4 pulgares por brazo. La orientación de las filas es NNE, NorNorEste (N+25º).
Riego: El viñedo ha sido cultivado en régimen de riego deficitario, mediante aplicación semanal por goteo equivalente al 25% de la ETo, desde la parada de crecimiento de pámpanos principales hasta la semana de vendimia. La cantidad media de agua aportada durante la campaña en el período de 2012 a 2014 fue aproximadamente de 125 mm, con el fin de garantizar un régimen hídrico que permitiera un desarrollo normal del viñedo.


Resultados
Los resultados obtenidos durante el período de estudio de 2012 a 2014 mostraron que el clon CL-96 fue el menos productivo, con una reducción media del 24% en la producción de uva respecto a los clones CL-128, el más productivo, y CL-89. Las diferencias observadas en el rendimiento se debieron principalmente a la variación en el peso del racimo. El peso de madera de poda mostró claras diferencias entre clones, de manera que el clon CL-128 resultó más vigoroso que el resto, con incrementos de peso del 25% respecto al clon CL-96 y del 41% respecto al clon CL-89. La variación del peso del sarmiento fue la causa determinante de las diferencias en el peso de madera de poda entre los clones estudiados.
En cuanto a la composición básica de la uva, el clon CL-96 presentó mayores niveles de concentración de azúcares y de potasio, mientras que el clon CL-128 sobresalió por sus valores más altos de acidez titulable y de ácido málico, y su índice más bajo de polifenoles totales. Es decir, el clon CL-96 mostró cierta capacidad de intensificación de la maduración mientras que el clon CL-128 presentó un comportamiento menos favorable en términos de maduración de la uva, probablemente derivado de su mayor nivel productivo, habiéndose situado el clon CL-89 en una posición más cercana al clon CL-96 o al clon CL-128 dependiendo del parámetro analizado.
En definitiva, atendiendo a las diferencias observadas entre clones, tanto en el comportamiento productivo como en el relativo a la calidad de la uva, existe la posibilidad de conjugar las mismas, en la elección de uno de los clones de bruñal, con los objetivos productivos y cualitativos específicos de cualquier posible plantación de viñedo de dicha variedad.19

Conclusiones
La variedad tinta bruñal es una variedad minoritaria que presenta las sinonimias españolas de albarín tinto (utilizada en Asturias) y baboso tinto (utilizada en Canarias), así como la sinonimia portuguesa de alfrocheiro preto. Bruñal está inscrita como nombre principal en el Registro de Variedades Comerciales, de la Oficina Española de Variedades Vegetales, desde su aprobación en 2011 (BOE 71, de 24 de marzo de 2011), en la que se admiten oficialmente las dos sinonimias citadas.
La variedad bruñal fue localizada a través de una amplia prospección individualizada de cepas en viñedos antiguos de las diversas zonas de producción de la DO Arribes, situada en el Oeste de las provincias de Zamora y Salamanca y limítrofe con Portugal a través del Duero.
La descripción de bruñal destaca el porte semierguido del pámpano y la forma pentagonal de la hoja, con tres lóbulos, tamaño pequeño y vellosidad tumbada en su haz así como una longitud de peciolo corta. El tamaño de racimo y el tamaño de baya son pequeños, siendo los racimos cilíndricos y normalmente compactos y la baya, más bien esférica, de color negro-azulado.
«El comportamiento agronómico y enológico de bruñal muestra un potencial de calidad elevado.»
El comportamiento agronómico y enológico de bruñal muestra un potencial de calidad elevado, fundamentalmente a través de su alta capacidad de maduración tecnológica, mantenimiento del nivel de acidez, concentración polifenólica y maduración aromática afrutada.
El interés por esta variedad está llevando a un incipiente desarrollo de su expansión, con la multiplicación de material masal por parte de diversos viveros de vid, no solo en el ámbito de la DO Arribes sino también en otras zonas de Castilla y Léon, y de otras regiones españolas.
El programa de selección clonal en marcha de la variedad bruñal puede permitir el uso de un material vegetal con garantías sanitarias y agronómicas, por parte del sector vitícola, de los diferentes clones que pueden ser certificados de entre los seleccionados por el Departamento de Viticultura del ITACyL. En una primera fase, la evaluación de los clones CL-96, CL-128 y CL-89 aporta al productor la posibilidad de su elección en función de las características y de los objetivos de las nuevas plantaciones.
Finalmente, tomando el ejemplo de la variedad bruñal, se puede valorar muy satisfactoriamente el esfuerzo que conlleva la recuperación de una variedad minoritaria, puesto que a pesar del amplio período y del intenso trabajo necesario para ello, el resultado final permite ofrecer nuevas e interesantes posibilidades al sector vitícola, tanto a través de la diversidad como generalmente de la propia calidad del producto final en sí mismo.

Agradecimientos
Este artículo, cuya base de trabajo fue presentada en el VII Foro Mundial del Vino, en Logroño, y en la XXX Reunión del GTEVE, en Bilbao, ha contado con financiación INIA, básicamente mediante el proyecto RF2005-00200-00-00, fondos FEDER y de la Junta de Castilla y León. La consecución del mismo ha sido posible gracias a la colaboración del personal del antiguo Departamento de Viticultura del ITACyL, en particular de César Arranz y José A. Rubio, y de los técnicos de la Estación Enológica de Rueda (Valladolid).

Bibliografía
1. García de los Salmones, N.: Memoria General de las Sesiones del Congreso y Ponencias Presentadas. Congreso Nacional de Viticultura, Pamplona: Imprenta Provincial, 1914, pp: 521-533.
2. Suárez Cantón, N.: Asturias vinícola. Breves apuntes sobre el vino de Cangas de Tineo. Revista de Asturias (Oviedo) 1879, Año III, nº 14: 219-221, nº 15: 233-238.
3. Pacottet, P.: Viticultura. Barcelona: Salvat, 1928, 644 p.
4. Comenge, M.: La vid y los vinos españoles. Madrid: Marsiega, 1942, 235 p.
5. Zerolo, J.; Cabello, F.; Espino, A.; Borrego, J.; Ibañez, J.; Rodríguez-Torres, I.; Muñoz-Organero, G.; Rubio, C.; Hernández, M.: Variedades de vid de cultivo tradicional en Canarias. Santa Cruz de Tenerife: Instituto Canario de Calidad Agroalimentaria, 2006, 222 p.
6. Martín J.P.; Santiago J.L.; Pinto-Carnide, O.; Leal, F.; Martínez, M.C.; Ortiz, J.M.: Determination of relationship among autochthonous grapevine varieties (Vitis vinifera L.) in the Northwest of the Iberian Peninsula by using microsatellite markers. Genetic Resources and Crop Evolution 2006; 53: 1255-61.
7. Rubio, J.A.; Yuste, J.; Arranz, C.; Martín, J.P.; Ortiz, J.M.: Variedades autóctonas de vid de Arribes del Duero: descripción y sinonimias. Viticultura y Enología Profesional 2005; 99: 5-17.
8. Yuste, J.; Arranz, C.; Ortiz, J.; Rubio, J.A.: Caracterización de la variedad Bruñal en la D.O. Arribes. La Semana Vitivinícola 2010; 3332: 2566-573.
9. Böhm, J.: O grande livro das castas. Lisboa: Chaves Ferreira Publicações, 2007, 229 p.
10. Gallego, C.; Cidón, C.: El vino uva a uva. Madrid: Everest, 2005, 367 p.
11. Para más información, véase: www.vinotierracangas.com
12. Chomé, C.; Sotés, V.; Benayas, F.; Cayuela, M.; Hernández, M.; Cabello, F.; Ortiz, J.; Rodríguez-Torres, I.; Chaves, J.: Variedades de vid. Registro de variedades comerciales. Madrid: Ministerio de Agricultura, Pesca y Alimentación. Secretaría General Técnica, 2003, 303 p.
12. Pereira, J.F.; Pereira, C.A.; Sousa, M.A.; Amador, R.M.; Cunha, L.A.; Ribeiro, C.A.; Santos, A.J.; Sousa, A.C.; Rodrigues, F.P.: Catálogo das Castas mais cultivadas das Regiões Vitivinícolas de Chaves, Planalto Mirandês e Valpaços. Direcção Regional de Agricultura de Tras-os-Montes, Godim (Portugal), 2001, 35 p.
13. OIV: Codes des caractères descriptifs des varietés et espéces de Vitis. París: A. Dedon, 1984, 190 p.
14. GENRES 081 European Union Project: Primary and secondary description list for grapevine cultivars and species (Vitis). Siebeldingen (Germany): Institut für Rebenzüchtung Geilweillerhof, 2001.
15. Thomas, M.R.; Scott, N.S.: Microsatellite repeats in grapevine reveal DNA polymorphism when analysed as sequence-tagged sites (STSs). Theor Appl Gen 1993; 86: 985-90.
16. Bowers, J.E.; Dangi, G.S.; Vignani, R.; Meredith, C.P. : Isolation and characterización of new polymorphic simple sequence repeat loci in grape (Vitis vinifera L.). Genome 1996; 39: 628-33.
17. Sefc, K.; Regner, F.; Turetschek, E.; Glössl, J.H.; Steinkellner, H.: Identification of microsatellite sequences in Vitis riparia and their applicability for genotyping of different Vitis species. Genome 1999; 42: 367-73.
18. Cabello, F.; Ortiz, J.M.; Muñoz-Organero, G.; Rodríguez-Torres, I.; Benito, A.; Rubio, C.; García, S. Sáiz, R. (2011). Variedades de vid en España. Madrid: Editorial Agrícola Española, 2011, 489 p.
19. Yuste, J.; Arranz, C.; Barajas, E.; Rubio, J.A.: Comparación preliminar, agronómica y cualitativa, de 3 clones preseleccionados de la variedad inta Bruñal, en Valladolid, durante el período 2012-2014. XXX Reunión del GTEVE, 25 y 26 de marzo 2015, Bilbao.
20. Yuste, J.; Arranz, C.; Alburquerque, M.V.; Rubio, J.A.: Variedades autóctonas de vid en Castilla y León: clones certificados a disposición de la viticultura. La Semana Vitivinícola 2006; 3123: 1942-7.